離心機(jī)進(jìn)行腎單層細(xì)胞培養(yǎng)
組織培養(yǎng)就是將組織或細(xì)胞從機(jī)體取出,用人工方法培養(yǎng)使組織或細(xì)腦在體外得以生存、生長和繁殖。組織培養(yǎng)分為器官培養(yǎng)、組織塊培養(yǎng)和細(xì)胞培養(yǎng)。目前工作中應(yīng)用較廣的是細(xì)胞培養(yǎng)。常用于病毒病的診斷和生物藥品(疫苗、診斷抗原等)的生產(chǎn)。
組織培養(yǎng)的方法很多,大體分為懸浮培養(yǎng)和固定培養(yǎng)兩類。懸浮培養(yǎng)是將切碎的組織塊通過離心機(jī)進(jìn)行離心分離,然后將通過低速離心機(jī)分離出來的分散的細(xì)胞放在適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)液中,讓其浮游于液體小進(jìn)行培養(yǎng),然后接種病毒。
另外還有固定培養(yǎng)法是使組織塊通過低速離心機(jī)分散的細(xì)胞粘附與容器壁上進(jìn)行培養(yǎng),待細(xì)胞生長良好后接種病毒。病毒在組織培養(yǎng)細(xì)胞中繁殖的主要標(biāo)志是細(xì)胞病變(壞死、崩解、脫落等),細(xì)胞融合或形成包涵體,對紅細(xì)胞的吸附作用等。
下面簡單介紹通過低速離心機(jī)進(jìn)行“腎單層細(xì)胞培養(yǎng)”的一般操作技術(shù)。
1.取腎:用無菌操作取出斷乳前后幼齡動(dòng)物的腎臟置滅菌平皿中,剪去留的被膜和脂肪,并縱向切成兩半,剪去腎的被膜和脂肪,并縱向切成兩半,剪去腎盂及髓質(zhì)部分,用含雙抗(指青、鏈霉素,下同)的漢克氏液洗凈,移置小燒杯中,剪成乳糜狀,再用漢克氏液洗2—3次,至液體澄清無血細(xì)胞為止。
2.消化;加入10倍的0.125%胰酶液進(jìn)行消化。有熱消化法(在37℃水浴中)和冷消化法(在4℃冰箱中)兩種。消化的時(shí)間根據(jù)不同的組織細(xì)胞和所用胰酶的活性而定,直至聚成絮狀的腎組織又分散開。取出傾去胰酶,用漢克氏液洗滌數(shù)次,然后加入少量乳漢液,用吸管進(jìn)行吹打(即吸入和吹出)10-20次,使組織分散為細(xì)胞。將分散的細(xì)胞經(jīng)2—3層消毒紗布過濾,取濾液置于低速離心機(jī)中以1500轉(zhuǎn)/分離心十分鐘,棄去上清液,加適昆乳漢液混勻,再次通過低速離心機(jī)離心,最后加入乳漢液使細(xì)胞懸浮其中,收集于滅菌三角瓶中。
3.細(xì)胞計(jì)數(shù)和分裝:取已制好的細(xì)胞懸浮液,用計(jì)數(shù)白細(xì)胞的方法計(jì)數(shù),根據(jù)計(jì)數(shù)結(jié)果,用營養(yǎng)液(pH6.8—7.0)稀釋為每毫升含50-60萬細(xì)胞,分裝于小扁瓶中(容量約50毫升的扁瓶加懸液約5毫升),也可分裝在鏈霉素小瓶中。
4.培養(yǎng):在37℃培養(yǎng),3—4天即可粘附瓶壁形成單層細(xì)胞,以后每過3—4大更換一次維持液。
5.接毒;將病料剪碎,按1:4加含雙抗的漢克氏液研磨成乳糜狀,經(jīng)凍融處理使細(xì)胞破碎,病毒充分釋放,用低速離心機(jī),將轉(zhuǎn)速控制在3000轉(zhuǎn)/分左右離心15分鐘,將上清液接種到已生長單層細(xì)胞的培養(yǎng)瓶中,在37℃溫箱中吸附30-60分鐘,然后加入維持液繼續(xù)培養(yǎng)。
6.收獲病毒:每日或隔日用低倍顯微鏡觀察細(xì)胞病變情況,當(dāng)有50-75%細(xì)胞出現(xiàn)病變隊(duì)時(shí)可收集培養(yǎng)瓶中液體,從放在冰箱(-20℃)中保存,此即繁殖的病毒液。
7.注意事項(xiàng):培養(yǎng)皿及其他使用器具的潔凈、低速離心機(jī)的使用、水的質(zhì)量、酸堿度、無菌操作等,都是關(guān)系到組織培養(yǎng)成敗的重要問題,必須嚴(yán)格規(guī)定的要求去做,
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